Sign in

close
Create an Account

Shopping cart

close

ไคโตโอลิโกแซคคาไรด์ กับประสิทธิภาพในการต่อต้านแบคทีเรียที่ก่อให้เกิดสิว

สิวเป็นหนึ่งในปัญหาทางผิวหนังที่พบได้บ่อยที่สุดประมาณ 80% ของวัย 11-30 ปีเลยครับ การเกิดสิวนั้นมีปัจจัยสำคัญหลายประการ เช่น แบคทีเรียที่ทำให้เกิดโรคผิวหนัง  ฮอร์โมน และการหลั่งไขมันที่เพิ่มขึ้น

ถึงแม้ว่าสิวจะไม่ได้มีอันตรายถึงชีวิต แต่สิวก็ส่งผลหลายอย่างกับคนที่เป็นสิวเลยหละครับ ไม่ว่าจะเป็นการส่งผลต่อการเกิดแผลเป็น ผิวอักเสบ การทำให้รู้สึกไม่มั่นใจ ไม่กล้าออกไปเจอหน้าผู้คน บางคนเป็นหนักก็นำไปสู่สภาวะโรคซึมเศร้า เป็น social phobias เนื่องจากการเกิดสิวก็มี

สาเหตุของการเกิดสิว

ในทางวิทยาศาสตร์นั้นเป็นที่ทราบกันดีว่า Staphylococcus epidermidis, Propionibacterium acnes, Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa และ Candida albicans ล้วนเป็นเชื้อก่อให้เกิดโรคผิวหนังที่เกี่ยวข้องกับการพัฒนาของ keratinization follicular ที่ผิดปกติและการอักเสบ

และในบรรดาปัจจัยหลายประการที่ก่อให้เกิดการเกิดสิวนั้น เจ้าตัวแบคทีเรีย Propionibacterium acnes (P. acnes) ก็เป็นปัจจัยสำคัญอีกตัวที่เป็นตัวก่อปัญหาสร้างสิวมากวนใจพวกเราครับ

วิธีการรักษาสิวแบบทั่วไป

ทีนี้เวลาที่เกิดสิว เราก็ต้องหาทางรักษาใช่ไหมครับ ซึ่งโดยทั่วไปแล้วการรักษาสิวนั้น จะมีการใช้พวก เรติโนไนด์. เบนโซอิลเปอร์ออกไซด์ และยาปฏิชีวนะ โดยจะถูกนำมาใช้เพื่อควบคุมสิวและฆ่าแบคทีเรียที่เกี่ยวข้องกับการเกิดสิว แต่อย่างไรก็ตามครับ การรักษาด้วยยาปฏิชีวนะและเบนโซอิลเปอร์ออกไซด์ที่ใช้ในการรักษาสิวนั้นมักจะก่อให้เกิดผลข้างเคียงหลายประการตามมา เช่น แบคทีเรียเริ่มดื้อยาทำให้ใช้ไม่ได้ผล นอกจากจะฆ่าแบคทีเรียที่ก่อให้เกิดสิวแล้ว มันก็ทำลายแบคทีเรียชนิดดีต่อผิวหนังด้วย และสร้างความเสียหายต่ออวัยวะที่สัมผัสสารที่ว่าในกรณีที่ใช้ยาเหล่านั้นเป็นเวลานาน นอกจากนี้ยังเป็นพิษต่อเซลล์มนุษย์อีกด้วยครับ

แล้วเราจะมีทางไหนบ้างละครับ ที่จะยับยั้งการเกิดสิวได้ เพราะการแก้ปัญหาที่ดีต้องแก้ที่ต้นเหตุ

ไคโตโอลิโกแซคคาไรด์กับฤทธิ์ในการต่อต้าน P. acnes

นักวิทยาศาสตร์จึงได้มุ่งเน้นไปที่การพัฒนาสารทางเลือกที่สามารถต่อต้านแบคทีเรียและปลอดภัยมากกว่าการรักษาด้วยวิธีที่มีมา

การวิจัยค้นคว้าที่ว่านี้ มีการศึกษาและนำไคโตโอลิโกแซคคาไรด์มาใช้ในการยับยั้งการเจริญเติบโตของ Propionibacterium acnes ซึ่งเป็นสาเหตุของการเกิดสิวครับ และก็ได้ค้นพบว่า สารตัวนี้สามารถยับยั้งได้อย่างดีมากๆ

จากภาพประกอบ เป็นภาพจากกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน ที่ให้เห็นถึงฤทธิ์ในการต่อต้านแบคทีเรียของไคโตโอลิโกแซคคาไรด์ครับ Credit: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/core/lw/2.0/html/tileshop_pmc/tileshop_pmc_inline.html

จากผลการวิจัยนั้น ทำให้ไคโตโอลิโกแซคคาไรด์ถูกเลือกมาใช้ในการรักษาสาเหตุการเกิดสิวเนื่องจากมันมีฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรีย  P. acnes แบบสูงมากๆ และยังไม่มีอันตรายแบบวิธีรักษาด้วยยาปฏิชีวนะหรือสารเดิมที่เคยใช้งานกันอยู่

กล่าวโดยสรุปก็คือไคโตโอลิโกไคโตซานมีฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรีย P. acnes อันเป็นสาเหตุของการเกิดสิว การค้นพบที่ได้จากการวิจัยครั้งนี้ชี้ให้เห็นว่าไคโตโอลิโกแซคคาไรด์ จะเป็นทางเลือกหนึ่งที่ดีมากในการรักษาสิว เนื่องจากมีฤทธิ์ต้านเชื้อแบคทีเรียต่อแบคทีเรียที่เกี่ยวข้องกับการเกิดสิว

นี่เป็นอีกเหตุผลหนึ่งที่ทำไมผลิตภัณฑ์ของ Dr.RATH คือตัว Radiance Essence ใช้ไคโตโอลิโกแซคคาไรด์เป็นสารหลัก เพราะว่ามันสามารถรักษาที่ต้นเหตุเลยครับ ซึ่งการที่นำมาใช้กับสกินแคร์นั้น ก็ต้องมีการปรับสูตรและความเข้มข้นให้เหมาะสมกับผิวหนังมนุษย์ให้มากที่สุด ซึ่งทาง Dr.RATH เองก็เป็นหนึ่งในผู้เชี่ยวชาญในด้านไคโตโอลิโกแซคคาไรด์ คุณจึงมั่นใจได้ถึงคุณภาพจากผลิตภัณฑ์ชิ้นนี้ครับ


References

1. Uhlenhake E, Yentzer BA, Feldman SR. Acne vulgaris and depression: a retrospective examination. J. Cosmet. Dermatol. 2010;9:59–63. doi: 10.1111/j.1473-2165.2010.00478.x. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
2. Farrar MD, Ingham E. Acne: inflammation. Clin. Dermatol. 2004;22:380–384. doi: 10.1016/j.clindermatol.2004.03.006. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
3. Ash C, Harrison A, Drew S, Whittall R. A randomized controlled study for the treatment of acne vulgaris using high-intensity 414 nm solid state diode arrays. J. Cosmet. Laser Ther. 2015;17:170–176. doi: 10.3109/14764172.2015.1007064. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
4. Lee JH, Eom SH, Lee EH, Jung YJ, Kim HJ, Jo MR, Son KT, Lee HJ, Kim JH, Lee MS, Kim YM. In vitro antibacterial and synergistic effect of phlorotannins isolated from edible brown seaweed Eisenia bicyclis against acne-related bacteria. Algae. 2014;29:47–55. doi: 10.4490/algae.2014.29.1.047.[CrossRef[Google Scholar]
5. Liu PF, Nakatsuji T, Zhu W, Gallo RL, Huang CM. Passive immunoprotection targeting a secreted CAMP factor of Propionibacterium acnes as a novel immunotherapeutic for acne vulgaris. Vaccine. 2011;29:3230–3238. doi: 10.1016/j.vaccine.2011.02.036. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
6. Han S, Lee K, Yeo J, Baek H, Park K. Antibacterial and anti-inflammatory effects of honeybee (Apis mellifera) venom against acne-inducing bacteria. J. Med. Plants Res. 2010;4:459–464.[Google Scholar]
7. Kim JY, Oh TH, Kim BJ, Kim SS, Lee NH, Hyun CG. Chemical composition and anti-inflammatory effects of essential oil from Farfugium japonicum flower. J. Oleo Sci. 2008;57:623–628. doi: 10.5650/jos.57.623. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
8. Lee SH, Ryu BM, Je JY, Kim SK. Diethylaminoethyl chitosan induces apoptosis in HeLa cells via activation caspase-3 and p53 expression. Carbohydr. Polym. 2011;84:571–578. doi: 10.1016/j.carbpol.2010.12.027. [CrossRef[Google Scholar]
9. Kim JH, Je JY, Kim YM. Anti-inflammatory effects of chitosan-phytochemical conjugates against Propionibacterium acnes-induced inflammation. Korean J. Fish. Aquat. Sci. 2016;49:589–593.[Google Scholar]
10. Cho YS, Kim SK, Ahn CB, Je JY. Preparation, characterization, and antioxidant properties of gallic acid-grafted-chitosans. Carbohydr. Polym. 2011;83:1617–1622. doi: 10.1016/j.carbpol.2010.10.019.[CrossRef[Google Scholar]
11. Seo S, King JM, Prinyawiwatkul W. Simultaneous depolymerization and decolorization of chitosan by ozone treatment. J. Food Sci. 2007;72:522–526. doi: 10.1111/j.1750-3841.2007.00563.x. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
12. Kim SK, Rajapakse N. Enzymatic production and biological activities of chitosan oligosaccharides (COS): a review. Carbohydr. Polym. 2005;62:357–368. doi: 10.1016/j.carbpol.2005.08.012. [CrossRef[Google Scholar]
13. Lodhi G, Kim YS, Hwang JW, Kim SK, Jeon YJ, Je JY, Ahn CB, Moon SH, Jeon BT, Park PJ. Chitooligosaccharide and its derivatives: preparation and biological applications. BioMed Res. Int. Article ID 654913 (2014) [PMC free article] [PubMed]
14. Xia WS. Physiological activities of chitosan and its application in functional foods. J. Chinese Inst. Food Sci. Technol. 2003;3:77–81. [Google Scholar]
15. Bravo-Osuna I, Millotti G, Vauthier C, Ponchel G. In vitro evaluation of calcium binding capacity of chitosan and thiolated chitosan poly (isobutyl cyanoacrylate) core-shell nanoparticles. Int. J. Pharm. 2007;338:284–290. doi: 10.1016/j.ijpharm.2007.01.039. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
16. Xia W, Liu P, Zhang J, Chen J. Biological activities of chitosan and chitooligosaccharides. Food Hydrocolloid. 2011;25:170–179. doi: 10.1016/j.foodhyd.2010.03.003. [CrossRef[Google Scholar]
17. Park PJ, Je JY, Jung WK, Byun HG, Kim SK. Free radical scavenging activities of chitooligosaccharides hydrolyzed from chitosan with high degree of deacetylation on 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl radical., J. Chitin Chitosan 9: 108–113 (2004)
18. Jung WK, Moon SH, Kim SK. Effect of chitooligosaccharides on calcium bioavailability and bone strength in ovariectomized rats. Life Sci. 2006;78:970–976. doi: 10.1016/j.lfs.2005.06.006. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
19. Grierson DS, Afolayan AJ. Antibacterial activity of some indigenous plants used for the treatment of wounds in the Eastern Cape. South Africa. J. Ethnopharmacol. 1999;66:103–106. doi: 10.1016/S0378-8741(98)00202-5. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
20. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI). Methods for dilution antimicrobial susceptibility tests for bacteria that grow aerobically: Approved standard, 8th ed. CLSI document M07-A8. CLSI, Wayne, PA, pp 68 (2006)
21. Amyes S, Miles RS, Thomson CJ, Tillotson G. Antimicrobial Chemotherapy: Pocketbook. CRC Press, Florida, pp 25 (1996)
22. Jenkins SG, Schuetz AN. Current concepts in laboratory testing to guide antimicrobial therapy. Mayo Clin. Proc. 2012;87:290–308. doi: 10.1016/j.mayocp.2012.01.007. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
23. Odds FC. Synergy, antagonism, and what the chequerboard puts between them. J. Antimicrob. Chemother. 2003;52:1. doi: 10.1093/jac/dkg301. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
24. Hsieh MH, Yu CM, Yu VL, Chow JW. Synergy assessed by checkerboard. A critical analysis. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 1993;16:343–349. doi: 10.1016/0732-8893(93)90087-N. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
25. Kim YH, Kim JH, Kim DH, Kim SH, Kim HR, Kim YM. Synergistic Antimicrobial Effect of Sargassum serratifolium (C. Agardh) C. Agardh extract against human skin pathogens. Korea. J. Food Sci. Technol. 2016;48:241–246. [Google Scholar]
26. Rabea EI, Badawy ME, Stevens CV, Smagghe G, Steurbaut W. Chitosan as antimicrobial agent: applications and mode of action. Biomacromolecules. 2003;4:1457–1465. doi: 10.1021/bm034130m.[PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
27. Champer J, Patel J, Fernando N, Salehi E, Wong V, Kim J. Chitosan against cutaneous pathogens. AMB Express. 2013;3:37. [PMC free article] [PubMed[Google Scholar]
28. Shon DH. Chitosan oligosaccharides for functional foods and microbial enrichment of chitosan oligosaccharides in soy-paste. In: Proceedings of the International workshop on Bioactive Natural Products. The Committee on Science and Technology in Developing Countries (COSTED) and the Science Council of Japan, Tokyo, Japan: 56–66. (2001)
29. Tharanathan RN, Kittur FS. Chitin—The undisputed biomolecule of great potential. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2003;43:61–87. doi: 10.1080/10408690390826455. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
30. Park SC, Nah JW, Park Y. pH-dependent mode of antibacterial actions of low molecular weight water-soluble chitosan (LMWSC) against various pathogens. Macromol. Res. 2011;19:853–860. doi: 10.1007/s13233-011-0812-1. [CrossRef[Google Scholar]
31. Goy RC, Britto DD, Assis OB. A review of the antimicrobial activity of chitosan. Polimeros. 2009;19:241–247. [Google Scholar]
32. Eaton P, Fernandes JC, Pereira E, Pintado ME, Malcata FX. Atomic force microscopy study of the antibacterial effects of chitosans on Escherichia coli and Staphylococcus aureusUltramicroscopy. 2008;108:1128–1134. doi: 10.1016/j.ultramic.2008.04.015. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
33. Soussy CJ, Cluzel R, Courvalin P. Definition and Determination of in vitro antibiotic susceptibility breakpoints for bacteria in France. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 1994;13:238–246. doi: 10.1007/BF01974543. [PubMed] [CrossRef[Google Scholar]
34. Eom SH, Park JH, Yu DU, Choi JI, Choi JD, Lee MS, Kim YM. Antimicrobial activity of brown alga Eisenia bicyclis against methicillin-resistant Staphylococcus aureusFish. Aquat. Sci. 2011;14:251–256. [Google Scholar]

ผลิตภัณฑ์ของเรา

เรื่องล่าสุด

Shop
0 Cart
My account
Scroll To Top